CUTANA? ChIC / CUT&RUN Kit 快速入門
Kit v4 - Manual v4.0
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第一天
第一部分:CUT&RUN緩沖液的制備(約30分鐘)
1.?按下表所述配制緩沖液。
注意:應(yīng)根據(jù)完整手冊(cè)附錄1.1中的說明,根據(jù)細(xì)胞類型優(yōu)化Digitonin(洋地黃皂苷) 的用量。
緩沖液名稱 | 組分 | 1 RXN | 8 RXN | 16 RXN | 保存 |
Wash Buffer | Pre-Wash Buffer | 1.8 mL | 14.4 mL | 28.8 mL | 室溫,供第一天使用 |
25× Protease Inhibitor | 72 μL | 576 μL | 1.15 mL |
1M Spermidine | 0.9 μL | 7.2 μL | 14.4 μL |
Cell Permeabilization Buffer | Wash Buffer | 1.4 mL | 11.2 mL | 22.4 mL | 4℃,供第2天使用 |
5% Digitonin | 2.8 μL | 22.4 μL | 44.8 μL |
Antibody Buffer | Cell Perm. Buffer | 100 μL | 800 μL | 1.6 mL | 冰上,供第1天使用 |
0.5M EDTA | 0.4 μL | 3.2 μL | 6.4 μL |
注意:以下流程皆按單個(gè)樣本計(jì)算,請(qǐng)根據(jù)實(shí)際樣本數(shù)量等比例配制
。
第二部分:ConA磁珠活化(約30分鐘)
2. 輕輕重懸ConA磁珠,取11 μL至1.5 mL離心管中。
3. 將離心管放在磁力架上,使溶液澄清;用移液器去除上清液。
4. 從磁力架上取下離心管。立即加入100 μL冷的Bead Activation Buffer,并用移液器將磁珠充分重懸。將離心管放回磁力架,使溶液澄清,用移液器去除上清液;此步驟重復(fù)一次。
5. 加入11 μL冷的Bead Activation Buffer重懸磁珠。
6. 按照10 μL/管的量,將磁珠等分到8聯(lián)排管中;置于冰上。
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第三部分:細(xì)胞與活化磁珠結(jié)合(約30分鐘)
7. 計(jì)數(shù)起始細(xì)胞并確認(rèn)其完整性和活力。每樣本使用500,000個(gè)細(xì)胞(可多加10%)。
8. 室溫下以600×g的轉(zhuǎn)速離心3分鐘,用移液器去除上清液。
9. 用100 μL的Wash Buffer重懸細(xì)胞。室溫下以600×g的轉(zhuǎn)速離心3分鐘,用移液器去除上清液;此步驟重復(fù)一次。
10. 用105 μL的Wash Buffer重懸細(xì)胞。對(duì)制備好的細(xì)胞進(jìn)行計(jì)數(shù)并檢查其完整性。
11. 將 100 μL 細(xì)胞轉(zhuǎn)移到含有10 μL 活化 ConA 磁珠的8聯(lián)排管中。輕輕渦旋重懸,短暫快速離心,將磁珠收集到管底部。
12. 室溫孵育10分鐘,使細(xì)胞吸附到磁珠上。
13. 如果使用多通道移液器,請(qǐng)將試劑槽置于冰上,注入冷的Antibody Buffer。注意:一次取出并更換一條8聯(lián)排管的緩沖液,以避免 ConA 磁珠變干和樣品丟失。
14. 將離心管放在磁力架上,使溶液澄清,用移液器去除上清液。保存10 μL上清液用于臺(tái)盼藍(lán)染色,以確定上清液中沒有細(xì)胞(可依據(jù)完整手冊(cè)附錄1.2)。
15. 從磁力架上取下離心管。立即加入50μL冷的Antibody Buffer并用移液器吹吸重懸。取 10 μL重懸樣品以確認(rèn)細(xì)胞結(jié)合到了ConA磁珠上(可依據(jù)完整手冊(cè)附錄1.2)。
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第四部分:抗體結(jié)合(約30min +過夜)
16.?瞬時(shí)離心K-MetStat Panel原液并用移液器吹吸混勻(切勿渦旋)。在指定用于H3K4me3和IgG對(duì)照抗體的反應(yīng)中,加入2 μL K-MetStat Panel并渦旋混勻。注意:如果使用的細(xì)胞數(shù)少于500000個(gè),請(qǐng)按照完整手冊(cè)第16頁的說明減少K-MetStat Panel的量。
17. 每個(gè)樣品加入0.5 μg抗體。對(duì)于指定的對(duì)照反應(yīng),加入1μL?IgG或H3K4me3對(duì)照抗體。輕輕渦旋混勻。
18. 在4oC條件下,置于旋轉(zhuǎn)混勻儀(nutator)上孵育過夜,管蓋稍稍抬高。切勿翻轉(zhuǎn)離心管。
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第二天
第五部分:pAG-MNase結(jié)合(約40 min)
19. 將試劑槽放在冰上,注入冷的Cell Perm. Buffer。
20. 將離心管從4℃條件下取出,瞬時(shí)離心收集液體。注意:磁珠過夜可能沉淀,屬正?,F(xiàn)象。
21. 將離心管置于磁力架上,使溶液澄清,去除上清液。
22. 將離心管保留在磁力架上。每管加入200μL冷的Cell Perm. Buffer,用移液器去除上清液;此步驟重復(fù)一次。
23. 從磁力架上取下離心管。每管加入50μL冷的Cell Perm. Buffer,輕輕渦旋混勻。注意:磁珠在這個(gè)階段可能會(huì)結(jié)塊,可用移液器輕柔吹吸,使結(jié)塊分散。
24. 每管加入2.5μL pAG-MNase。輕輕旋渦或用移液器吹吸,以重懸磁珠并使酶均勻分布。
25. 室溫孵育10分鐘。
26. 瞬時(shí)離心后,置于磁力架上,使溶液澄清,去除上清液。
27. 將離心管保留在磁力架上。每管加入200μL冷的Cell Perm. Buffer,用移液器去除上清液;此步驟重復(fù)一次。
28. 從磁力架上取下離心管。每管加入50μL冷的Cell Perm. Buffer。用移液器輕輕吹吸混勻、分散團(tuán)塊。
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第六部分:目標(biāo)染色質(zhì)片段化(約3小時(shí))
29. 將離心管置于冰上。每管加入1 μL 100 mM的氯化鈣,輕輕渦旋或用移液器吹吸均勻。
30. 將離心管(管蓋略微抬高)放在旋轉(zhuǎn)混勻儀上4oC孵育 2 小時(shí)。
31. 制備終止液:取1μL?E. coli?Spike-in DNA與33μL Stop Buffer混合(單個(gè)反應(yīng)用量)。輕輕旋渦混勻。注意:如果使用的細(xì)胞數(shù)少于500,000個(gè),請(qǐng)按照完整手冊(cè)附錄2中的說明稀釋E. coli?Spike-in DNA。
32. 孵育結(jié)束后,向每個(gè)反應(yīng)中加入34 μL終止液,輕輕旋渦混勻。
33. 將反應(yīng)離心管置于37℃熱循環(huán)儀中,孵育10分鐘。
34. 瞬時(shí)離心后,置于磁力架上,使溶液澄清。將含有DNA富集產(chǎn)物的上清液轉(zhuǎn)移到新的8聯(lián)排管中。丟棄含有ConA磁珠的離心管。
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第七部分:DNA純化(約30分鐘)
35. 用無水乙醇(EtOH)和分子生物學(xué)級(jí)別的水制備85%乙醇(EtOH)(現(xiàn)用現(xiàn)配)。
36. 重懸SPRIselect試劑(Beckman Coulter, Inc),向每個(gè)反應(yīng)管中緩慢加入119 μL。
37. 輕輕旋渦混勻,瞬時(shí)離心以收集液體。室溫孵育5分鐘。
38. 將離心管放在磁力架上2-5分鐘。用移液器去除上清液,不要用移液管吸頭攪動(dòng)磁珠。
39. 將離心管保留在磁力架上。每管加入 180 μL?85% EtOH,用移液器去除上清液;此步驟重復(fù)一次。
40. 瞬時(shí)離心,管蓋朝內(nèi),使磁珠留在離心管一側(cè)。將離心管放回磁力架上,去除殘留的EtOH。
41. 從磁力架上取下離心管,打開管蓋。室溫風(fēng)干磁珠2-3分鐘或直到液體蒸發(fā),但磁珠仍然呈現(xiàn)潮濕的啞光棕色。如果磁珠有裂紋或呈淺棕色,說明過于干燥。
42. 每管加入17 μL?0.1X TE buffer洗脫DNA。
43. 渦旋重懸磁珠,室溫孵育2分鐘。
44. 將離心管置于磁力架上2分鐘。將15μL CUT&RUN DNA轉(zhuǎn)移到新的8聯(lián)排管中。
45. 使用Qubit熒光儀對(duì)1 μL DNA進(jìn)行濃度測(cè)定。繼續(xù)文庫制備或?qū)NA保存在-20oC。
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關(guān)于預(yù)期結(jié)果,可參閱完整手冊(cè)。切勿使用TapeStation/Bioanalyzer檢測(cè) CUT&RUN DNA。DNA的產(chǎn)量太低,無法在這些平臺(tái)上進(jìn)行檢測(cè),而且在實(shí)驗(yàn)步驟的這一步也無法提供有用的信息??傻鹊?strong>文庫制備后再檢查片段分布。
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